工艺总流程：香菇→浸泡→剪碎一加各种酶液或水→45℃，恒湿6h→煮沸一过滤→定容→加添加剂→真空灌装→成品
操作要求
原料选择
去杂：选择无虫蛀霉变，色泽正常的香菇（等外菇、残次菇、菇柄亦可）
浸泡：水质要符合饮用标准，浸泡时间一般为5~10min，浸软即可，浸泡时间不可太长，否则，营养损失较多。（鲜菇去杂洗净不用浸泡）
剪碎：手工或机械剪切成片或丝均可。
水洗：将剪（切）碎的香茹用饮用水漂洗干净。目的：进一步去污排垢，晾干备用。
香菇提取液的制备
纤维素酶法：取碎菇5g，加入0.1%的纤维素酶液100nl，45℃恒温水浴中，酶解6h，煮沸10min。
木瓜蛋白酶法：取碎菇5g，加入0.15%的木瓜蛋白酶液100ml，45℃恒温水浴酶解6h，煮沸10min。
混合酶法：取碎菇5g，加入0.1%纤维素酶液和0.15%木瓜蛋白酶液各50ml，45℃水浴中酶解6h，煮沸10min。
浸煮法：取碎菇5g，直接加饮用水100ml，45℃恒温水浴6h，煮沸10min。
水煮法：取碎菇5g，加100ml饮用水，直接煮沸15min。
过滤：将上述各法得到的香菇提取液，先分别用两层纱布粗滤一次，除去香菇可见的残渣，接着，用6-8层纱布再分别细滤两次，即可得到相当澄清的香菇提取液。
定容：用消毒过的冷饮用水补足香菇提取液在煮涕过程中损失的水分，定容至100ml
灵芝菌株活化：将保藏的灵芝斜面菌株无菌操作接种于甘草培养基，28℃恒温培养 15～20d 左右，直至甘草培养基布满白色菌丝体。
种子摇瓶培养：制备液体培养基，三角摇瓶装液量 100ml/250ml，灭菌，冷却，无菌接入甘草菌丝体，在28± 1℃下180r/min，摇床培养96h。
发酵罐药质发酵：采用 10L 机械搅拌式发酵罐，药质培养基中接种灵芝进行发酵(液体种子接种量10%，V/V)。选择直接影响发酵效果的投料量(L)、培养温度(℃)、转轴搅拌速度(r/min)和发酵周期(h)四个因素进行正交试验，以发酵生物量(鲜)为指标，确定最佳发酵条件波细胞粉碎机，处理 30min；将处理液再置121℃、0.5h高温高压提取，以充分提取菌丝体胞内有效成分；后经板框过滤(工作压力0.8MPa，滤膜孔径5μm，流速 0.5m/s)得滤液，将滤液静置于低温冰箱，24h 后进行冷冻离心(-6℃，6000r/min，5min)，获得药质发酵上清液。分别测定此上清液(Ⅰ)与未添加药质成分的灵芝发酵处理液(Ⅱ)和未经灵芝发酵的药质培养基(Ⅲ)总黄酮和总多糖含量，进行比较和分析。